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禽腺病毒(FADV)核酸检测试剂盒(PCR法)
  • 品牌:YLKbio
  • 产地:国产/进口
  • 型号:50T/盒
  • 货号:YLK-PCR0002
  • 价格: ¥2800/盒
  • 发布日期: 2024-05-11
  • 更新日期: 2024-12-20
产品详请
产地 国产/进口
品牌 YLKbio
货号 YLK-PCR0002
用途 科研
包装规格 50T/盒
是否进口

通用名称:禽腺病毒(FADV)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)

Name :Fowl Adenovirus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

包装规格:25T/盒、50T/盒

预期用途:

禽腺病毒(Fowl Adenovirus, FADV)是无囊膜、线性双股 DNA 病毒,属于腺病毒科、禽腺病毒属成员。该病毒可感染鸡、火鸡及其他禽类。FADV 可致鸡发生包涵体肝炎、心包积水综合征和肌胃糜烂等疾病。该病常与禽类其他病原混合感染,感染鸡只可继发再/生/障/碍/性贫/血、肝炎及产蛋量下降等。FADV 呈 性分布,病毒可经粪-口途径水平传播,也可垂直传播,给养禽业造成巨大经济损失。

本试剂盒适用于检测呼/吸/道分泌物棉拭子(感染 I 群禽腺病毒的鸡、火鸡、鹅、鹌鹑)、卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织、泄殖腔拭子(感染 II、III 群禽腺病毒的鸡、鸭)等样本中的禽腺病毒,用于禽腺病毒感染的辅助诊断。

检验原理:

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对禽腺病毒特异性引物,结合一条特异性探针, 用荧光 PCR 技术对禽腺病毒的核酸进行体外扩增检测,用于临/床/上对可疑感染者的病原学诊断。

试剂组成:

包装规格

25T/盒

50T/盒

FADV 反应液

500μL×1 管

500μL×2 管

酶液

25μL×1 管

50μL×1 管

FADV 阳性质控品

50μL ×1 管

50μL ×1 管

阴性质控品

250μL ×1 管

250μL ×1 管

说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

储存条件及有效期:

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

适用仪器:

ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

标本采集:

病死禽取卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织;活鸡取呼/吸/道拭子或泄殖腔拭子,放于 1mL 50%

甘/油生理盐水中

保存和运输:

上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

使用方法:
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理
组织样品:称取样品约 1g,手/术/剪剪碎混匀后,于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;泄殖腔拭子直接取 100μL 提取
1.2 核酸提取
推荐采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取,请    按照试剂说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
试剂 FADV 反应液 酶液
用量(样本数为 N) 20μL 1μL
3. 加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;
荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,请勿选择 ROX 参比荧光。
4.3 推荐循环参数设置:
步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
1 1 cycle 95℃ 10min 否
2 40 cycles 94℃ 15sec 否
55℃ 30sec 是
5. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
5.2 结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;
可疑:检测通道 35 阴性:样本检测结果 Ct 值>38 或无 Ct 值。
6. 质控标准
阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
7. 检测方法的局限性
7.1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
7.2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
7.3. 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
7.4. 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
7.5. 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
7.6. 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
7.7. 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症/状以及其他检测手段。

注意事项:
1. 所有操作严格按照说明书进行;
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3. 反应液应避光保存;
4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7. 实验完毕后用 10%次氯/酸或 75%酒/精或紫外灯处理工作台和移液器;
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
参考文献:
[1]文艳玲, 禽腺病毒 hexon 基因克隆表达及间接 ELISA 和荧光 PCR 检测方法的建立[J]. 广西大学, 2008.


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